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Glyoxalase I Double Nickase Plasmid (h) | sc-401914-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
Glyoxalase I Double Nickase Plasmid (h2) | sc-401914-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Das menschliche Gen **GLO1** kodiert die Glyoxalase I, ein zytosolisches Metalloenzym, das die glutathionabhängige Entgiftung von Methylglyoxal katalysiert, indem es Hemithioacetal‑Zwischenprodukte zu **S‑D‑Lactoylglutathion** umsetzt. Diese Aktivität ist zentral für das Glyoxalase-System, das die Anreicherung reaktiver Dicarbonyle und nachgelagerter fortgeschrittener Glykationsendprodukte (AGEs) begrenzt, und verknüpft GLO1 damit mit dem zellulären Redoxgleichgewicht, der Proteostase und metabolischen Stressantworten. Störungen der Glyoxalase‑I‑Funktion können den mit der Glykolyse verbundenen Carbonylstress verändern und Signal‑ sowie Schadenswege beeinflussen, an denen Glykation, oxidativer Stress und Entzündung beteiligt sind. Veränderungen der GLO1‑Expression oder ‑Aktivität wurden in Zusammenhängen wie diabetesbedingten Komplikationen, Neurodegeneration und Tumormetabolismus als Indikator der Dicarbonyl‑Entgiftungskapazität untersucht.
Glyoxalase I Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des GLO1-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von GLO1 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die GLO1-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit GLO1-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.