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Plasmide CRISPR/Cas9 KO EAAT4 (m) | sc-422986 | 20 µg | $397.00 |
Slc1a6 code le transporteur d’acides aminés excitateurs 4 (EAAT4), un transporteur du glutamate à haute affinité dépendant du Na+, qui contribue à l’élimination du glutamate extracellulaire et limite la signalisation excitotoxique au niveau des synapses. Dans le SNC murin, EAAT4 est enrichi dans les neurones de Purkinje du cervelet et module la transmission synaptique en couplant la recapture du glutamate aux gradients ioniques, influençant ainsi l’excitabilité et la plasticité neuronales. En régulant la neurotransmission glutamatergique, EAAT4 s’inscrit à l’interface de voies liées à l’homéostasie synaptique, à la signalisation dépendante du calcium et aux réponses neuro-inflammatoires déclenchées par un dérèglement du glutamate. Une capacité altérée de transport du glutamate est pertinente dans des modèles de dysfonction cérébelleuse et, plus largement, dans des phénotypes associés à la neurodégénérescence où la signalisation excitatrice et l’intégrité synaptique sont perturbées.
Le plasmide CRISPR/Cas9 KO EAAT4 (m) est un ensemble de plasmides conçus pour la disruption ciblée du gène Slc1a6 dans les lignées cellulaires mouse. Chaque plasmide co-exprime un ARN guide unique (sgRNA) ciblant un site distinct au sein du Slc1a6, ainsi que la nucléase Cas9 de Streptococcus pyogenes. Les plasmides codent également pour la GFP, ce qui permet l'identification par fluorescence et l'enrichissement des cellules transfectées avec succès par microscopie à fluorescence ou cytométrie en flux.
La conception multi-guide augmente la probabilité de générer des insertions ou des délétions (indels) qui perturbent le cadre de lecture ouvert Slc1a6 à la suite de la formation de cassures double brin médiées par Cas9. Les cassures d'ADN introduites par le système CRISPR/Cas9 sont réparées par des voies endogènes de jonction non homologue (NHEJ), ce qui entraîne fréquemment des mutations par décalage du cadre de lecture qui suppriment l'expression de la protéine EAAT4.
Ce système de knock-out CRISPR permet la génération efficace de modèles cellulaires déficients en Slc1a6 pour l'étude de la signalisation de EAAT4, les études de génomique fonctionnelle, la recherche en biologie du cancer et l'évaluation des réponses thérapeutiques dans des lignées cellulaires humaines.
CRISPR +/- HDR
Réservé à la recherche. N'est pas destiné à un usage diagnostique ou thérapeutique.