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Doublecortin Double Nickase Plasmid (h) | sc-400033-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
Doublecortin Double Nickase Plasmid (h2) | sc-400033-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
DCX kodiert Doublecortin, ein mikrotubuliassoziiertes Protein, das an Mikrotubuli bindet und sie stabilisiert, um während der Gehirnentwicklung die neuronale Migration, das Neuritenauswachsen und die Bildung kortikaler Schichten zu regulieren. Doublecortin koordiniert den Umbau des Zytoskeletts und die Kopplung zwischen Zentrosom und Zellkern und wirkt dabei mit der Mikrotubuli-Dynamik zusammen, die Zellpolarität und gerichtete Bewegung formt. Eine Störung von DCX beeinträchtigt die radiale Migration und die Positionierung von Neuronen; krankheitsverursachende Varianten sind mit neuroentwicklungsbedingten Fehlbildungen verbunden, darunter X-chromosomal vererbte Lissenzephalie und subkortikale Bandheterotopie. Als DCX-Marker und funktioneller Regulator in unreifen Neuronen wird es häufig genutzt, um Mechanismen der Neurogenese, der Zytoskelettregulation und der Entwicklung neuronaler Schaltkreise zu untersuchen.
Doublecortin/DCX Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des DCX-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von DCX abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die DCX-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit DCX-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.