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CYP4A10 CRISPR Activation Plasmid (m) | sc-419927-ACT | 20 µg | $397.00 |
Das Mausgen **Cyp4a10** kodiert das Cytochrom-P450-Enzym **CYP4A10**, eine mikrosomale Fettsäure-ω-Hydroxylase, die den Stoffwechsel mittel- und langkettiger Fettsäuren katalysiert, darunter die Umwandlung von Arachidonsäure zu bioaktiven Eicosanoiden wie **20-HETE**. Über diese Reaktionen trägt CYP4A10 zur Lipidhomöostase und zum Redoxgleichgewicht bei und kann Signalnetzwerke beeinflussen, die mit der Regulation durch den Peroxisomen-Proliferator-aktivierten Rezeptor (**PPAR**), dem tubulären Transport in der Niere und dem Gefäßtonus verknüpft sind. Eine veränderte Expression oder Aktivität von Cyp4a10 wurde mit dysregulierten Eicosanoid-Profilen und nachgelagerten Effekten auf die Blutdruckkontrolle, die Nierenphysiologie und entzündliche Antworten in Verbindung gebracht. Daher wird dieses Gen häufig in Modellen metabolischen Stresses sowie in Signalwegen untersucht, die die Lipidoxidation mit kardiorenalen Phänotypen verbinden.
CYP4A10 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (m) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen Cyp4a10-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
CYP4A10 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (m) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des Cyp4a10-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der Cyp4a10-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen CYP4A10-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native Cyp4a10-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von CYP4A10-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des CYP4A10-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem Cyp4a10-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.