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Bcl-2 Double Nickase Plasmid (m2) | sc-419304-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Das Mausgen Bcl2 kodiert das Bcl-2-Protein, einen in den Mitochondrien lokalisierten Regulator der intrinsischen Apoptose, der die Integrität der äußeren Mitochondrienmembran aufrechterhält und die Freisetzung von Cytochrom c sowie die Aktivierung von Caspasen unterdrückt. Bcl-2 wirkt innerhalb des Interaktionsnetzwerks der BCL-2-Familie, um pro-survivale und pro-apoptotische Signale auszubalancieren, und prägt so zelluläre Schicksalsentscheidungen nach Stressantworten und bei Entzug von Wachstumsfaktoren, wobei es zugleich mit Signalwegen interagiert, die die Calciumhomöostase und Autophagie steuern. Eine dysregulierte Bcl2-Expression ist mit einer veränderten Überlebensfähigkeit von Immun- und Nervenzellpopulationen verknüpft und wird breit mit onkogener Transformation sowie Resistenz gegenüber Programmen des Zelltods in Zusammenhang gebracht. Das Gene Editing von Bcl2 in der Maus unterstützt mechanistische Untersuchungen der Apoptose, der Lymphozytenentwicklung und -selektion, der mitochondrialen Checkpoint-Signalgebung sowie der Genotyp-Phänotyp-Modellierung in krankheitsrelevanten Kontexten.
Bcl-2 Das Double-Nickase-Plasmid (m2) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des Bcl2-Lokus in mouse-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von Bcl2 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die Bcl2-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit Bcl2-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.