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Atg12 Double Nickase Plasmid (h) | sc-401894-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
Atg12 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-401894-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
ATG12 kodiert Atg12, einen ubiquitinähnlichen Modifikator, der an ATG5 konjugiert wird und sich mit ATG16L1 zum ATG12–ATG5–ATG16L1-Komplex zusammenschließt – einer Kernkomponente der Autophagosomenbiogenese. Dieser Komplex unterstützt die Lipidierung von LC3/ATG8 und treibt die Expansion des Phagophors während der Makroautophagie voran, indem er Nährstoffsensorik, Organelle-Qualitätskontrolle und Proteostase mit dem lysosomalen Abbau verknüpft. Über diese Funktionen trägt Atg12 zur Ausgestaltung zellulärer Antworten auf metabolischen Stress, oxidative Schäden und Pathogenbelastung bei; zudem wird ein veränderter Autophagie-Flux mit der Krebsbiologie, Neurodegeneration und entzündlichen Erkrankungen in Verbindung gebracht. ATG12-abhängige Signalwege werden daher häufig untersucht, um die Autophagosomenbildung, selektive Autophagie und stressadaptive Signalkaskaden zu analysieren.
Atg12 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des ATG12-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von ATG12 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die ATG12-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit ATG12-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.