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ALS2CL Double Nickase Plasmid (h) | sc-417873-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
ALS2CL Double Nickase Plasmid (h2) | sc-417873-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
ALS2CL (ALS2 C-terminal like) kodiert ein zytosolisches Protein, das an Membrantransportprozessen und der endosomalen Dynamik beteiligt ist; berichtete Interaktionen verknüpfen es mit Transportwegen, die durch kleine GTPasen reguliert werden. ALS2CL wird im Kontext der neuronalen Zellbiologie untersucht, in der Endosomenreifung, Vesikelrecycling und die Kopplung an das Zytoskelett entscheidend für die Aufrechterhaltung der axonalen Homöostase und Signalübertragung sind. Eine veränderte Regulation des endolysosomalen Transports und verwandter Proteostase-Wege ist für Neurodegeneration relevant, und ALS2CL wurde im Zusammenhang mit ALS2-assoziierten Mechanismen der Vulnerabilität von Motoneuronen untersucht. Daher wird ALS2CL in humanen Zellmodellen häufig als Ansatzpunkt genutzt, um intrazellulären Transport, Stressantworten und neuronale Erhaltungsprogramme zu untersuchen.
ALS2CL Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des ALS2CL-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von ALS2CL abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die ALS2CL-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit ALS2CL-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.