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AID Double Nickase Plasmid (h) | sc-401542-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
AID Double Nickase Plasmid (h2) | sc-401542-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
AICDA kodiert die aktivierungsinduzierte Cytidindeaminase (AID), ein DNA-editierendes Enzym, das während der Transkription Cytosin in einzelsträngiger DNA zu Uracil desaminiert. In aktivierten B-Zellen initiiert AID die somatische Hypermutation und die Klassenwechselrekombination von Immunglobulin-Genen, indem es die Entstehung von Läsionen mit den Reparaturwegen der Basenexzisionsreparatur und der Fehlpaarungsreparatur koppelt und so Antikörperaffinität und Isotyp formt. Eine fehlregulierte AID-Aktivität kann Off-Target-Mutationen und chromosomale Translokationen verursachen und verbindet eine Dysregulation von AICDA mit der genomischen Instabilität, wie sie bei B‑Zell-Malignomen und in anderen Kontexten aberranter DNA-Schadenssignalgebung beobachtet wird. Daher wird AICDA intensiv im Zusammenhang mit adaptiver Immunität, Mutagenesemechanismen und der Wahl von DNA-Reparaturwegen untersucht.
AID Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des AICDA-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von AICDA abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die AICDA-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit AICDA-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.