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ADH5 CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-403859-ACT | 20 µg | $397.00 |
Das humane ADH5 kodiert die Alkoholdehydrogenase 5 (auch als S‑Nitrosoglutathion-Reduktase, GSNOR, bekannt), eine NAD‑abhängige Dehydrogenase, die die zelluläre Formaldehyd-Entgiftung und die Bioaktivität von Stickstoffmonoxid steuert, indem sie S‑Nitrosoglutathion metabolisiert. Durch die Regulation der Protein‑S‑Nitrosylierung und des Redoxgleichgewichts beeinflusst ADH5 Signalwege der Stressantwort, die mitochondriale Funktion sowie Pfade, die mit Entzündung und DNA‑Schäden verknüpft sind. Veränderte ADH5‑Aktivität wurde mit fehlreguliertem nitrosativem Stress und einer beeinträchtigten Aldehyd-Clearance in Verbindung gebracht – Prozesse, die in der kardiopulmonalen Biologie, der Immun-Signalgebung und der für Krebs relevanten Redoxanpassung eine Rolle spielen. Daher wird ADH5 häufig in Modellen für oxidative/nitrosative Schädigung, metabolismusgetriebene Signalgebung und Genomstabilität unter Aldehydstress untersucht.
ADH5 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen ADH5-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
ADH5 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des ADH5-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der ADH5-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen ADH5-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native ADH5-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von ADH5-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des ADH5-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem ADH5-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.