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14-3-3 ε CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-400998-ACT | 20 µg | $397.00 |
YWHAE kodiert das humane Adapterprotein 14-3-3 Epsilon (ε), einen phosphoserin-/phosphothreoninbindenden Regulator, der die Lokalisation, Stabilität und Aktivität zahlreicher Zielproteine moduliert. Über Interaktionen mit Kinasen und Signalvermittlern trägt 14-3-3 ε zur Koordination der PI3K/AKT-, MAPK- und Zellzyklus-Checkpoint-Signalwege bei und beeinflusst damit Apoptose, Proliferation und Stressantworten. Es wirkt an der Umgestaltung des Zytoskeletts und an neuronalen Entwicklungsprogrammen mit, indem es Phosphoproteinkomplexe als Gerüstprotein organisiert und den subzellulären Transport feinabstimmt. Eine fehlregulierte YWHAE-Expression oder veränderte 14-3-3-ε-Interaktionen wurden mit neuroentwicklungsbezogenen Phänotypen und onkogenen Signalnetzwerken in Verbindung gebracht, was seinen Einsatz in mechanistischen Studien zur Neuverschaltung von Signalwegen unterstützt.
14-3-3 ε Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen YWHAE-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
14-3-3 ε Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des YWHAE-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der YWHAE-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen 14-3-3 ε-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native YWHAE-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von 14-3-3 ε-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des 14-3-3 ε-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem YWHAE-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.