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V-ATPase A1 Plasmide di attivazione CRISPR (h) | sc-400975-ACT | 20 µg | $397.00 |
ATP6V0A1 codifica l’isoforma a1 della subunità a del settore V0 della H+-ATPasi vacuolare (V-ATPasi), una pompa protonica multisubunità che acidifica endosomi, lisosomi e vescicole secretorie. Sostenendo l’acidificazione degli organelli, V-ATPasi A1 regola l’endocitosi mediata da recettore, il flusso autofagico, la proteolisi lisosomiale, il traffico vescicolare e le vie di sensing dei nutrienti collegate alla segnalazione mTOR. Una corretta attività della V-ATPasi è necessaria per lo smistamento proteico pH-dipendente e per gli eventi di fusione di membrana che modellano il ciclo delle vescicole sinaptiche e l’omeostasi proteica generale. La disregolazione dell’acidificazione di vescicole e lisosomi associata a perturbazioni di ATP6V0A1 è rilevante negli studi sulla neurodegenerazione, sui fenotipi dello sviluppo e sulle risposte allo stress cellulare guidate da una ridotta capacità degradativa.
V-ATPase A1 Il plasmide di attivazione CRISPR (h) fornisce un approccio mirato e non distruttivo per sovraregolare l'espressione endogena di ATP6V0A1 senza alterare la sequenza di DNA sottostante.
V-ATPase A1 Il plasmide di attivazione CRISPR (h) è un sistema SAM (mediatore di attivazione sinergico) a tre plasmidi progettato per la sovraregolazione trascrizionale altamente efficiente e sito-specifica del locus ATP6V0A1 nelle linee cellulari umane. Il sistema è costruito attorno a una Cas9 cataliticamente inattiva (dCas9) che porta due mutazioni inattivanti (D10A e N863A) che eliminano l'attività nucleasica preservando al contempo il legame con il DNA. Questa dCas9 è fusa con VP64, un potente attivatore trascrizionale, ed è coespressa con un gene di resistenza alla blasticidina per la selezione. Il secondo plasmide codifica la proteina di fusione MS2-p65-HSF1, un complesso attivatore secondario che agisce in sinergia con dCas9-VP64, insieme a un gene di resistenza all'igromicina. Il terzo plasmide codifica un sgRNA specifico per il bersaglio di 20 nt fuso a due aptameri di RNA MS2 che reclutano il complesso MS2-p65-HSF1 nel sito di attivazione, accompagnato da un gene di resistenza alla puromicina. I tre plasmidi vengono somministrati in un rapporto di massa 1:1:1 per un'espressione bilanciata di tutti i componenti del sistema.
Una volta assemblato nel locus bersaglio, il complesso SAM si lega a circa 200 bp a monte del sito di inizio della trascrizione ATP6V0A1, dove VP64, p65 e HSF1 agiscono in modo concertato per reclutare il machinery trascrizionale e guidare la sovraregolazione dell'espressione endogena di V-ATPase A1. A differenza della Cas9 con attività nucleasica, dCas9 non introduce rotture a doppio filamento né modifica la sequenza genomica, preservando il locus ATP6V0A1 nativo e consentendo lo studio delle risposte trascrizionali dipendenti da V-ATPase A1 nel locus endogeno, rendendolo uno strumento prezioso per studi funzionali, l'identificazione di geni bersaglio e la modellizzazione del ripristino della via V-ATPase A1 nelle cellule tumorali con espressione di ATP6V0A1 silenziata o ridotta.
Solo per uso di ricerca. Non destinato a uso diagnostico o terapeutico.