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SUMO-4 CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-403123-ACT | 20 µg | $397.00 |
Das humane Gen **SUMO4** kodiert **SUMO-4**, einen kleinen ubiquitinähnlichen Modifikator, der die Proteinfunktion durch **SUMOylierung** reguliert und dabei subzelluläre Lokalisation, Stabilität und Interaktionsnetzwerke beeinflusst. Eine SUMO-4‑abhängige posttranslationale Modifikation wurde mit stressresponsiver Signalübertragung und der Modulation transkriptioneller Programme in Verbindung gebracht, darunter Signalwege, die auf **NF-κB** zusammenlaufen, sowie die Regulation der angeborenen Immunantwort. Durch die Feinabstimmung der SUMOylierungsdynamik kann SUMO-4 die Proteostase und die Schwellenwerte entzündlicher Signalwege in Immun- und metabolisch aktiven Geweben beeinflussen. Varianten in **SUMO4** wurden im Kontext der Biologie autoimmuner und entzündlicher Erkrankungen untersucht, was es zu einem nützlichen Ziel für mechanistische Studien der Immun-Signalgebung und zellulärer Stressantworten macht.
SUMO-4 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen SUMO4-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
SUMO-4 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des SUMO4-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der SUMO4-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen SUMO-4-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native SUMO4-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von SUMO-4-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des SUMO-4-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem SUMO4-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.