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SPNS1 CRISPR/Cas9 KO质粒 (m) | sc-428602 | 20 µg | $397.00 | |||
SPNS1 HDR 质粒 (m) | sc-428602-HDR | 20 µg | $445.00 |
Spns1 编码 spinster homolog 1(SPNS1),这是一种类似多跨膜转运体的膜蛋白,被认为参与内体-溶酶体系统的稳态维持以及溶酶体介导的降解更新。在小鼠细胞中,SPNS1 与自噬溶酶体再生(autophagic lysosome reformation)、溶酶体酸化调控以及影响自噬与细胞应激反应的膜运输事件有关。SPNS1 的破坏可导致异常自噬溶酶体结构的积累并削弱降解能力,从而将该基因与神经退行性变、代谢失衡以及炎症相关的组织功能障碍等通路联系起来。这些特征使 Spns1 成为研究溶酶体质量控制以及自噬-溶酶体通路串扰的有用靶点。
SPNS1 CRISPR/Cas9 敲除质粒(m)是一组质粒池,旨在针对性地破坏mouse细胞系中的Spns1基因。该文库中的每个质粒均共表达一种独特的sgRNA,针对Spns1基因座内的不同位点,同时表达来自化脓性链球菌的Cas9核酸酶,并编码GFP以实现对成功转染细胞的荧光识别和富集。这种多引导策略提高了诱导产生功能性敲除的移码突变或缺失的概率,为单引导策略提供了更可靠的替代方案。在多个位点诱导的双链断裂(DSBs)可通过非同源末端连接(NHEJ)修复,或者当与随附的HDR供体模板配合使用时,可在基因座内的特定靶位点通过同源导向修复(HDR)进行修复。
若与表达 RFP 的 HDR 供体结合使用,可同时利用 GFP 和 RFP 荧光区分转染细胞群与编辑后的细胞群,从而简化基于流式细胞术的分选和克隆筛选工作流程。
对于需要确认且可筛选的敲除克隆的应用,SPNS1 HDR质粒(m)包含一个HDR供体构建体,其中含有嘧啶霉素抗性盒(PuroR)和红色荧光蛋白(RFP)报告基因,两侧由针对特定Spns1靶位点的同源臂包围。
与 SPNS1 CRISPR/Cas9 敲除质粒(m)共转染时:
HDR 供体构建体的loxP 位点位于 PuroR-RFP 选择盒的侧翼,可在克隆确认后干净利落地去除标记。通过随附的Cre 载体:sc-418923,瞬时表达 Cre 重组酶,切除基因盒,在Spns1 基因座内留下最小的残留 loxP 位点,消除对下游检测的潜在干扰效应。
这种两步法
仅供研究使用。不用于诊断或治疗。