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SLC35D1 Double Nickase Plasmid (h) | sc-407065-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
SLC35D1 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-407065-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
SLC35D1 kodiert einen im Golgi-Apparat lokalisierten Nukleotidzucker-Transporter, der UDP-Zucker über intrazelluläre Membranen austauscht und damit die Biosynthese von Glykosaminoglykanen und Proteoglykanen unterstützt. Durch die Regulation der luminalen Verfügbarkeit von Substraten für Glykosyltransferasen beeinflusst SLC35D1 den Aufbau der extrazellulären Matrix sowie knorpelbezogene Entwicklungsprozesse. Eine veränderte SLC35D1-Funktion wurde mit Defekten der Chondrogenese und der Skelettmorphogenese in Verbindung gebracht, was mit seiner Rolle bei der Bildung einer proteoglykanreichen Matrix übereinstimmt. In Zellmodellen kann die gezielte Störung von SLC35D1 genutzt werden, um zu untersuchen, wie der Nukleotidzucker-Fluss glykosylierungsabhängige Signalwege und matrixabhängige Phänotypen steuert.
SLC35D1 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des SLC35D1-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von SLC35D1 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die SLC35D1-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit SLC35D1-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.