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Heme Oxygenase 1/HMOX1 Double Nickase Plasmid (h) | sc-400157-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
Heme Oxygenase 1/HMOX1 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-400157-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
HMOX1 kodiert die Hämoxygenase 1 (HO-1), ein induzierbares, ER-assoziiertes Enzym, das den Abbau von Häm zu Biliverdin, freiem Eisen und Kohlenmonoxid katalysiert und so den Hämeturnover mit der zellulären Redoxhomöostase verknüpft. HO-1 ist ein zentraler Effektor der oxidativen Stressantwort und ist in die NRF2/KEAP1-Signalgebung, Eisenstoffwechsel- und Entzündungspfade eingebunden, um Zytoprotektion, mitochondriale Funktion und zelluläre Schicksalsentscheidungen zu modulieren. Eine veränderte Regulation von HMOX1 wurde mit einer dysregulierten Signalübertragung reaktiver Sauerstoffspezies, einer beeinträchtigten Eisensequestrierung sowie Veränderungen in zytokinvermittelten Antworten in Verbindung gebracht. Diese Prozesse werden häufig in Kontexten wie Gefäßbiologie, Neuroinflammation, metabolischem Stress und dem Remodeling des Tumormikromilieus untersucht, in denen Hämetabolismus und oxidativer Stress zentrale Einflussgrößen sind.
Heme Oxygenase 1/HMOX1 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des HMOX1-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von HMOX1 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die HMOX1-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit HMOX1-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.