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EDG-2 Double Nickase Plasmid (h) | sc-402843-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
EDG-2 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-402843-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
LPAR1 (EDG-2) kodiert einen G‑Protein‑gekoppelten Rezeptor für Lysophosphatidsäure, der hauptsächlich an Gαi/o, Gαq/11 und Gα12/13 koppelt, um die Rho/ROCK‑Signalübertragung, phospholipase‑C‑abhängige Calciumflüsse sowie die MAPK/ERK‑ und PI3K/AKT‑Signalwege zu regulieren. Über diese Kaskaden moduliert EDG‑2 den Umbau des Zytoskeletts, Zellmigration, Proliferation und Überleben und beeinflusst zudem die Gefäßpermeabilität und inflammatorische Signalgebung. Die LPAR1‑Aktivität integriert Signale von Lipidmediatoren in der extrazellulären Matrix und im stromalen Mikromilieu und prägt dadurch die Aktivierung von Fibroblasten sowie das Trafficking von Immunzellen. Eine fehlregulierte LPA‑LPAR1‑Signalgebung wurde mit fibrotischem Remodeling, Invasion von Krebszellen und metastaseassoziierten Verhaltensweisen sowie neuroinflammatorischen Prozessen in Verbindung gebracht, was LPAR1 zu einem häufigen Ziel mechanistischer Studien in krankheitsrelevanten Modellen macht.
EDG-2 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des LPAR1-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von LPAR1 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die LPAR1-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit LPAR1-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.