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Cdk5 Double Nickase Plasmid (m) | sc-419602-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
Cdk5 Double Nickase Plasmid (m2) | sc-419602-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Die murine cyclinabhängige Kinase 5 (Cdk5) ist eine prolin‑gerichtete Serin/Threonin‑Kinase, die durch Assoziation mit nicht‑Cyclin‑Cofaktoren wie p35 (Cdk5r1) und p39 (Cdk5r2) katalytisch aktiv wird. Cdk5 reguliert neuronale Migration, Neuritenauswuchs, die Dynamik synaptischer Vesikel und den Umbau des Zytoskeletts über die Phosphorylierung von Substraten in Mikrotubuli‑ und Aktin‑Netzwerken und greift dabei in MAPK‑Signalwege sowie zellzyklusunabhängige Kinase‑Signalwege ein. Eine dysregulierte Cdk5‑Aktivität wurde mit neurodegenerativen und neuroentwicklungsbedingten Phänotypen in Verbindung gebracht, unter anderem durch veränderte Phosphorylierung von Tau und anderen neuronalen Substraten sowie durch eine beeinträchtigte synaptische Homöostase. Neben der Biologie des Nervensystems trägt die Cdk5‑Signalgebung zu Stressantworten und zur kontextabhängigen Regulation von Adhäsion und Motilität bei und unterstützt damit mechanistische Studien in verschiedenen Zelltypen.
Cdk5 Das Double-Nickase-Plasmid (m) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des Cdk5-Lokus in mouse-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von Cdk5 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die Cdk5-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit Cdk5-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.