Date published: 2026-7-14

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ACSVL1 CRISPR Activationプラスミド (h): sc-405122-ACT

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  • 対象生物種: human
  • 20 µg のトランスフェクション準備済み、精製したプラスミドDNA、~20回トランスフェクション
  • ACSVL1 CRISPR Activationプラスミド (h)は、特異的に遺伝子の発現量を増加させるため、相乗的活性化メディエーター(SAM)転写活性化システムです。
  • ACSVL1 CRISPR Activationプラスミド (h)は、1:1:1の質量比で以下の3つのプラスミドがら成る:トランス活性化ドメインVP64に溶解する非活性化されたCas9 (dCas9)ヌクレアーゼ(D10A と H840A)をコード化したのプラスミド(ブラストサイジン耐性遺伝子を含めて)、MS2-p65-HSF1融合蛋白質をコード化したのプラスミド(ハイグロマイシン耐性遺伝子を含めて)、2つのMS2 RNAアプタマーに溶解する目標特異的な20ntガイドRNAをコード化したのプラスミド(ピューロマイシン耐性遺伝子を含めて)。
  • 得られたSAM複合体は、部位特異的な約200-250nt転写開始点の上流の領域に結合し、転写因子の強いリクルートメントを提供し、遺伝子の高い活性化効果が得られます。
  • ACSVL1 CRISPR活性化プラスミド(h)およびACSVL1 CRISPR活性化プラスミド(h2)によってコードされるgRNAは、SLC27A2転写開始点の上流にある異なる調節領域を標的としています。いずれか一方、または両方のデザインが利用可能である可能性があります
  • トランスフェクションの後、遺伝子ノックアウト効果は、抗体を用いたWB、IFまたはIHCによって検定されることができます: ACSVL1 抗体 (D-7): sc-393906
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    注文情報

    製品名カタログ #単位価格数量お気に入り

    ACSVL1 CRISPR Activationプラスミド (h)

    sc-405122-ACT
    20 µg
    $397.00

    SLC27A2 は、長鎖および超長鎖脂肪酸をアシル CoA チオエステルへと変換する、脂肪酸の輸送・活性化酵素である acyl‑CoA synthetase very long‑chain 1(ACSVL1)をコードしています。この反応はミトコンドリアおよびペルオキシソームでの脂質利用を支え、脂肪酸の取り込みを β 酸化、脂質リモデリング、エネルギー恒常性へと結び付けます。ACSVL1 の活性は、脂肪滴ダイナミクス、ペルオキシソーム機能、代謝ストレス応答を制御する経路とも交差します。脂肪酸の活性化や超長鎖脂質の取り扱いの破綻は、代謝疾患の機序、リポトキシシティに関連する炎症シグナル、ならびに肝臓・筋肉モデルにおける組織特異的脂質代謝の研究において重要なテーマです。

    ACSVL1 CRISPR活性化プラスミド(h)は、基盤となるDNA配列を変更することなく、内因性SLC27A2の発現を標的化し、非破壊的にアップレギュレートするアプローチを提供します。

    ACSVL1 CRISPR 活性化プラスミド (h) は、ヒト細胞株における SLC27A2 遺伝子座の高効率かつ部位特異的な転写アップレギュレーションのために設計された、3 つのプラスミドからなる相乗的活性化メディエーター (SAM) システムです。このシステムは、DNA結合能を維持しつつヌクレアーゼ活性を失わせる2つの不活性化変異(D10AおよびN863A)を有する、触媒活性のないCas9(dCas9)を中核としています。このdCas9は、強力な転写活性化因子であるVP64と融合しており、選別用のブラスティシジン耐性遺伝子と共に共発現します。2番目のプラスミドは、dCas9-VP64と協調して機能する二次活性化複合体であるMS2-p65-HSF1融合タンパク質をコードしており、ヒグロマイシン耐性遺伝子と共に発現する。3番目のプラスミドは、標的特異的な20塩基対のsgRNAをコードしており、これはMS2-p65-HSF1複合体を活性化部位に誘導する2つのMS2 RNAアプタマーと融合しており、さらにピューロマイシン耐性遺伝子が付随している。これら3つのプラスミドは、システム構成要素すべてが均等に発現するよう、質量比1:1:1で導入される。

    標的遺伝子座に集合すると、SAM複合体はSLC27A2転写開始点の上流約200 bpの領域に結合し、そこでVP64、p65、およびHSF1が協調して転写装置を動員し、内因性ACSVL1の発現上昇を促進する。ヌクレアーゼ活性を持つCas9とは異なり、 dCas9は二本鎖切断を導入したりゲノム配列を改変したりしないため、天然のSLC27A2遺伝子座が保持され、内因性遺伝子座におけるACSVL1依存性の転写応答の研究が可能となります。これにより、機能解析、標的遺伝子の同定、およびSLC27A2発現が沈黙または低下した腫瘍細胞におけるACSVL1経路の回復のモデル化を行う上で、貴重なツールとなります。

    研究用のみ。診断用または治療用ではありません。