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ZIP10 Double Nickase Plasmid (m) | sc-432673-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
ZIP10 Double Nickase Plasmid (m2) | sc-432673-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Slc39a10 kodiert den murinen Zinkinflux-Transporter ZIP10 (SLC39-Familie), der die Verfügbarkeit von Zn²⁺ im Zytosol und nachgeschaltete zinkabhängige enzymatische und transkriptionelle Programme reguliert. Durch die Kontrolle des Zinkeinstroms an Zellmembranen beeinflusst ZIP10 Prozesse wie Signaltransduktion, oxidative Stressantworten und die Funktion von Immunzellen, in denen Zink als Second Messenger und Kofaktor wirkt. Eine veränderte Homöostase des Zinktransports wird mit fehlregulierter Entzündung und metabolischem Stress in Verbindung gebracht, und die ZIP10-abhängige Zinkhandhabung wird häufig im Kontext hämatopoetischer und epithelialer Biologie untersucht. Daher ist Slc39a10 für mechanistische Untersuchungen zinkregulierter Signalwege relevant, darunter Zytokinsignalisierung, Redoxkontrolle und Programme der zellulären Differenzierung.
ZIP10 Das Double-Nickase-Plasmid (m) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des Slc39a10-Lokus in mouse-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von Slc39a10 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die Slc39a10-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit Slc39a10-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.