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Wip1 CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-400980-ACT | 20 µg | $397.00 |
PPM1D kodiert Wip1 (PPM1D), eine Mg2+/Mn2+-abhängige Serin/Threonin-Phosphatase, die durch p53 induziert wird und als zentraler negativer Feedback-Regulator der DNA-Schadensantwort fungiert. Wip1 dephosphoryliert mehrere Checkpoint- und Stress-Signalproteine, darunter p53, Komponenten des ATM/ATR-Signalwegs sowie Knotenpunkte der p38-MAPK-Signalübertragung, und prägt dadurch die Erholung von Zellzyklus-Checkpoints, die Genomstabilität und die Schwellen für Apoptose. Über die Modulation dieser Signalwege beeinflusst Wip1 die Reaktionen auf genotoxischen Stress und Replikationsstress; veränderte PPM1D-Aktivität und Kopienzahl wurden in unterschiedlichen Tumorkontexten beschrieben. Die experimentelle Manipulation von Wip1 wird широко eingesetzt, um Checkpoint-Dynamiken, stressadaptive Signalgebung und den Crosstalk zwischen Signalwegen zu untersuchen, die Proliferation und Seneszenz steuern.
Wip1 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen PPM1D-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
Wip1 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des PPM1D-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der PPM1D-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen Wip1-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native PPM1D-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von Wip1-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des Wip1-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem PPM1D-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.