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TRAP Double Nickase Plasmid (h) | sc-400892-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
TRAP Double Nickase Plasmid (h2) | sc-400892-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
ACP5 kodiert die tartratresistente saure Phosphatase (TRAP), ein Metalloenzym, das in Osteoklasten und aktivierten Makrophagen angereichert ist und in sauren Kompartimenten Phosphatester hydrolysiert. TRAP trägt über die Dephosphorylierung extrazellulärer und endosomaler Substrate zur Umgestaltung der Knochenmatrix, zum vesikulären Transport und zu redoxbezogenen Prozessen bei und passt damit zu Osteoklasten-Differenzierungsprogrammen, die downstream der RANKL–NF-κB- und MAPK-Signalwege ablaufen. Eine veränderte ACP5/TRAP-Aktivität ist mit einer dysregulierten Knochenneubildung und -resorption sowie mit inflammatorischen Phänotypen verknüpft und wird häufig im Kontext osteolytischer Krankheitsmechanismen und von Aktivierungszuständen von Immunzellen untersucht. In humanen Zellmodellen dient ACP5 als funktioneller Marker und mechanistischer Knotenpunkt zur Untersuchung von Osteoklastogenese, lysosomaler Biologie und Signalwegen der Makrophagen-Polarisierung.
TRAP Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des ACP5-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von ACP5 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die ACP5-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit ACP5-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.