
Bestellinformation
| Produkt | Katalog # | EINHEIT | Preis | ANZAHL | Favoriten | |
SMO/Smoothened Double Nickase Plasmid (m) | sc-435662-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
SMO/Smoothened Double Nickase Plasmid (m2) | sc-435662-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Das Mausgen *Smo* kodiert Smoothened (SMO), einen Sieben-Transmembran-Signaltransduktor, der die Aktivität des Hedgehog-Signalwegs stromabwärts von PTCH1 weiterleitet und GLI-abhängige Transkriptionsprogramme reguliert, die die embryonale Musterbildung, das Verhalten von Stamm- und Vorläuferzellen sowie die Gewebehomöostase steuern. Die Aktivierung von SMO beeinflusst primärzilienabhängige Signalereignisse und integriert sich in Signalwege, die Proliferation, Differenzierung und Entscheidungen über das Zellschicksal kontrollieren. Eine fehlregulierte Hedgehog–SMO-Signalgebung wird mit Entwicklungsanomalien und onkogenen Prozessen in Verbindung gebracht, einschließlich aberranten Wachstums und fehlerhafter Linienfestlegung in mehreren Geweben, weshalb *Smo* ein häufig genutzter Angriffspunkt für mechanistische Studien zur Regulation des Hedgehog-Signalwegs ist.
SMO/Smoothened Das Double-Nickase-Plasmid (m) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des Smo-Lokus in mouse-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von Smo abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die Smo-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit Smo-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.