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Riboflavin kinase CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-418359-ACT | 20 µg | $397.00 |
Das menschliche RFK-Gen kodiert die Riboflavinkinase, ein zytosolisches Enzym, das Riboflavin (Vitamin B2) phosphoryliert und so Flavinmononukleotid (FMN) bildet, einen wichtigen Vorläufer von Flavinadenindinukleotid (FAD). Durch die Kontrolle der zellulären Verfügbarkeit von FMN/FAD unterstützt RFK den flavoproteinabhängigen Redoxstoffwechsel, die mitochondriale oxidative Phosphorylierung sowie antioxidative Abwehrwege, die die Handhabung reaktiver Sauerstoffspezies beeinflussen. Störungen in der Riboflavin-Nutzung und der Homöostase von Flavin-Kofaktoren wurden in experimentellen Systemen mit Phänotypen metabolischen Stresses und einer erhöhten Anfälligkeit für neurodegenerative sowie kardiometabolische Funktionsstörungen in Verbindung gebracht. Die RFK-Expression ist daher ein hilfreicher Ansatzpunkt, um den Vitamin-Kofaktorstoffwechsel, die mitochondriale Bioenergetik und redoxregulierte Signalwege zu untersuchen.
Riboflavin kinase Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen RFK-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
Riboflavin kinase Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des RFK-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der RFK-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen Riboflavin kinase-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native RFK-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von Riboflavin kinase-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des Riboflavin kinase-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem RFK-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.