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RAET1G Double Nickase Plasmid (h) | sc-410520-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
RAET1G Double Nickase Plasmid (h2) | sc-410520-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
RAET1G kodiert einen Zelloberflächen-Liganden für NKG2D aus der RAET1/ULBP-Familie, der durch zellulären Stress induziert wird und an NKG2D auf NK-Zellen sowie auf Subpopulationen von T-Zellen bindet, um die Immunerkennung zu fördern. Seine Expression verknüpft DNA-Schadensantworten, entzündliche Signalwege und Membrantransportprozesse mit der Aktivierungsschwelle zytotoxischer Lymphozyten. Eine dysregulierte RAET1G-Expression wurde mit veränderter Immunüberwachung bei Krebs sowie mit entzündlichen Mikroumgebungen in Verbindung gebracht, in denen die Induktion von Stress-Liganden die Gewebeimmunität modulieren kann. Daher wird RAET1G häufig im Kontext von Signalwegen untersucht, die die stressinduzierte Immunogenität, Tumor–Immun-Interaktionen und die Regulation angeboren-ähnlicher Lymphozytenantworten steuern.
RAET1G Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des RAET1G-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von RAET1G abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die RAET1G-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit RAET1G-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.