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PERK CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-400080-ACT | 20 µg | $397.00 |
EIF2AK3 kodiert PERK, eine im ER (endoplasmatischen Retikulum) lokalisierte transmembrane Kinase, die die Anhäufung fehlgefalteter Proteine erkennt und die Unfolded-Protein-Response (UPR) auslöst. Bei ER-Stress phosphoryliert PERK eIF2α, um die globale Translation zu dämpfen, während gleichzeitig stressadaptierende Transkriptionsprogramme gefördert werden; dabei ist PERK in die ISR-Signalkaskade, die Redox-Regulation und die Autophagie integriert. Die PERK-Aktivität beeinflusst Zellschicksalsentscheidungen zwischen Anpassung und Apoptose durch Crosstalk mit ATF4/CHOP und anderen UPR-Zweigen und wirkt so auf Proteostase und metabolische Umprogrammierung ein. Eine fehlregulierte PERK-Signalgebung wurde mit Erkrankungen in Verbindung gebracht, die mit chronischem ER-Stress einhergehen, darunter Neurodegeneration, diabetesassoziierte β‑Zell-Dysfunktion und krebsassoziierte Stresstoleranz.
PERK Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen EIF2AK3-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
PERK Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des EIF2AK3-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der EIF2AK3-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen PERK-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native EIF2AK3-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von PERK-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des PERK-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem EIF2AK3-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.