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PARP-2 Double Nickase Plasmid (h) | sc-402224-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
PARP-2 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-402224-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
PARP2 kodiert die Poly(ADP-Ribose)-Polymerase 2 (PARP-2), ein nukleäres Enzym, das DNA-Einzelstrangbrüche erkennt und die Poly(ADP-Ribosyl)ierung katalysiert, um die DNA-Schadenssignalgebung zu koordinieren. PARP-2 wirkt an der Basenexzisionsreparatur und an umfassenderen Programmen zur Aufrechterhaltung des Genoms mit, indem es Reparaturfaktoren und chromatinassoziierte Proteine rekrutiert und moduliert. Über Crosstalk mit PARP1-abhängigen Antworten trägt PARP-2 dazu bei, die Toleranz gegenüber Replikationsstress zu regulieren und die genomische Integrität wiederherzustellen. Eine dysregulierte PARP2-Aktivität und veränderte PARP-Signalwege sind mit Phänotypen genomischer Instabilität assoziiert, die für die Krebsbiologie, Neurodegeneration und Modelle entzündlichen Stresses relevant sind.
PARP-2 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des PARP2-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von PARP2 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die PARP2-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit PARP2-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.