OPN1SW CRISPR Activation Plasmid (h): sc-400755-ACT
- Zielspezies: human
- 20 µg transfektionsfertige, aufgereinigte Plasmid DNA; geeignet für 20 Transfektionen
- OPN1SW CRISPR Activation Plasmid (h) ist ein Transkriptionsaktivierungs System (SAM) welches für die gezielte Verstärkung der Genexpression bestimmt ist
- OPN1SW CRISPR Aktivierungsplasmide (h) bestehen aus 3 Plasmiden im Massenverhältnis 1:1:1: ein Plasmid kodiert für die deaktivierte Cas9 (dCas9) Nuklease (D10A und N863A) fusioniert an die Transaktivierungsdomaine VP64 sowie ein Gen für die Blasticidin Resistenz; ein zweites Plasmid kodierend für das MS2-p65-HSF1 Fusionsprotein sowie ein Gen für die Hygromycin Resistenz; ein drittes Plasmid kodierd für die Ziel-spezifische 20 nt guide RNA fusioniert an zwei MS2 RNA Aptamere sowie ein Gen für die Puromycin Resistenz.
- Der entstehende SAM-Komplex (Mediator-Komplex zur synergistischen Gen-Aktivierung) bindet eine sequenzspezifische Region 200-250 nt upstream (in 5'-Richtung) des Transkriptionsstartsignals und rekrutiert dort ständig Transkriptionsfaktoren für eine verstärkte Gen-Aktivierung und Gen-Expression.
- Die vom OPN1SW CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) und vom OPN1SW CRISPR-Aktivierungsplasmid (h2) kodierten gRNAs zielen auf unterschiedliche regulatorische Regionen stromaufwärts der OPN1SW-Transkriptionsstartstelle ab. Eines oder beide Designs sind möglicherweise verfügbar
Bestellinformation
| Produkt | Katalog # | EINHEIT | Preis | ANZAHL | Favoriten | |
OPN1SW CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-400755-ACT | 20 µg | $397.00 | |||
OPN1SW CRISPR Activation Plasmid (h2) | sc-400755-ACT-2 | 20 µg | $397.00 |
OPN1SW codiert das kurzwellensensitive Opsin (S‑Opsin), einen G‑Protein‑gekoppelten Rezeptor, der in den Außensegmenten der Zapfen-Photorezeptoren lokalisiert ist und die Wahrnehmung von blauem Licht vermittelt. Nach Absorption eines Photons aktiviert OPN1SW die transducinabhängige Phototransduktion, wodurch die cGMP‑Phosphodiesterase-Signalkaskade angestoßen wird, cGMP‑gesteuerte Ionenkanäle schließen und nachgeschaltete Änderungen des Membranpotenzials entstehen, die die visuelle Signalübertragung prägen. Eine korrekte OPN1SW-Expression und Chromophorbindung sind für die Zapfenfunktion, die spektrale Abstimmung und die Integration in retinale Schaltkreise erforderlich. Veränderte Opsinaktivität oder eine Dysfunktion der Zapfen-Photorezeptoren ist relevant für erbliche Farbsehstörungen und weiter gefasste retinale Degenerationsprozesse und unterstützt mechanistische Untersuchungen der Zapfenbiologie.
OPN1SW Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen OPN1SW-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
OPN1SW Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des OPN1SW-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der OPN1SW-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen OPN1SW-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native OPN1SW-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von OPN1SW-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des OPN1SW-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem OPN1SW-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.