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LASS6 Double Nickase Plasmid (h) | sc-403901-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
LASS6 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-403901-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
CERS6 kodiert die Ceramid-Synthase 6 (LASS6), ein im endoplasmatischen Retikulum lokalisiertes Enzym, das bevorzugt C16-Ceramid erzeugt – ein zentrales bioaktives Sphingolipid, das die Membranzusammensetzung und Signalwege reguliert. Durch die Kontrolle der Ceramidmenge beeinflusst LASS6 den Sphingolipidstoffwechsel und greift in Signalwege ein, die Apoptose, Autophagie, ER-Stressantworten und entzündliche Signalübertragung steuern. Eine veränderte CERS6-Aktivität wurde mit einer gestörten Lipidhomöostase und Phänotypen in Verbindung gebracht, die für das Überleben und die Migration von Krebszellen, metabolischen Stress sowie neuroinflammatorische Prozesse relevant sind. Als Knotenpunkt in der Umwandlung zwischen Ceramid, Sphingomyelin und Glycosphingolipiden wird CERS6 häufig untersucht, um Lipid-Remodeling mit Organellenfunktion und Stressanpassungsprogrammen zu verknüpfen.
LASS6 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des CERS6-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von CERS6 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die CERS6-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit CERS6-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.