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KCC2 CRISPR/Cas9 KO Plasmid (h) | sc-402080 | 20 µg | $397.00 |
SLC12A5 kodiert den neuronspezifischen K+-Cl−-Kotransporter KCC2, einen zentralen Regulator der intrazellulären Chlorid-Homöostase, der hyperpolarisierende GABAerge und glyzinerge Neurotransmission ermöglicht. Indem KCC2 den Cl−-Ausstrom antreibt, prägt er die Stärke inhibitorischer Synapsen, die Membranerregbarkeit und die Reifung neuronaler Schaltkreise und steht in funktioneller Wechselwirkung mit Ionentransport- und synaptischen Signalwegen, die aktivitätsabhängige Plastizität steuern. Eine veränderte KCC2-Expression oder -Funktion wurde mit einer gestörten Erregungs-Hemmungs-Balance im zentralen Nervensystem in Verbindung gebracht, was die Relevanz für Studien zu Epilepsie, neuroentwicklungsbedingten Störungen, neuropathischen Schmerzen und Neurodegeneration unterstreicht. KCC2 wird außerdem als Marker und mechanistischer Knotenpunkt genutzt, um die Entwicklung inhibitorischer Synapsen, Chlorid-Dynamiken und Netzwerkoszillationen zu untersuchen.
Das KCC2 CRISPR/Cas9-KO-Plasmid (h) ist ein Pool von Plasmiden, die für die gezielte Disruption des SLC12A5-Gens in human-Zelllinien entwickelt wurden. Jedes Plasmid koexprimiert eine einzigartige Single-Guide-RNA (sgRNA), die auf eine bestimmte Stelle innerhalb des SLC12A5-Gens abzielt, zusammen mit der Streptococcus pyogenes Cas9-Nuklease. Die Plasmide kodieren zudem für GFP, was die fluoreszente Identifizierung und Anreicherung erfolgreich transfizierter Zellen mittels Fluoreszenzmikroskopie oder Durchflusszytometrie ermöglicht.
Das Multi-Guide-Design erhöht die Wahrscheinlichkeit, dass Insertionen oder Deletionen (Indels) entstehen, die den offenen Leserahmen von SLC12A5 nach der Cas9-vermittelten Bildung von Doppelstrangbrüchen unterbrechen. Durch das CRISPR/Cas9-System verursachte DNA-Brüche werden über endogene NHEJ-Wege (Non-Homologous End Joining) repariert, was häufig zu Frameshift-Mutationen führt, die die KCC2-Proteinexpression aufheben.
Dieses CRISPR-Knockout-System ermöglicht die effiziente Erzeugung von SLC12A5-defizienten Zellmodellen zur Untersuchung der KCC2-Signalübertragung, für funktionelle Genomstudien, in der Krebsbiologieforschung sowie zur Bewertung therapeutischer Reaktionen in menschlichen Zelllinien.
CRISPRs +/- HDRs
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.