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DnaJB6 CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-404227-ACT | 20 µg | $397.00 |
DNAJB6 kodiert das Co-Chaperon DnaJB6 aus der Hsp40-Familie, ein J-Domänen-Protein, das mit Hsp70 zusammenarbeitet, um Proteinfaltung, -sortierung und -abbau zu regulieren. DnaJB6 ist in Signal- und Regulationswegen angereichert, die die Proteostase steuern, darunter die Unterdrückung amyloidogener Aggregation, die Modulation der Autophagie sowie die Koordination der Ubiquitin-Proteasom-Qualitätskontrolle unter zellulärem Stress. Über diese Funktionen beeinflusst DNAJB6 die Organisation des Zytoskeletts und myogene Programme und wird mit Erkrankungen in Verbindung gebracht, die durch Proteinfehlfaltung und Muskeldegeneration gekennzeichnet sind, einschließlich der Gliedergürtel-Muskeldystrophie. Eine veränderte DNAJB6-Aktivität wird außerdem im Kontext der zellulären Stressanpassung und Proteominstabilität untersucht, was für die Forschung zu neurodegenerativen Erkrankungen und Krebsbiologie relevant ist.
DnaJB6 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen DNAJB6-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
DnaJB6 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des DNAJB6-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der DNAJB6-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen DnaJB6-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native DNAJB6-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von DnaJB6-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des DnaJB6-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem DNAJB6-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.