Not CRISPR data: the image illustrates antibody quality for visualizing CRISPR experiment results.
Not CRISPR data: the image illustrates antibody quality for visualizing CRISPR experiment results.
cystatin C 더블 틈내기효소 플라스미드 (h): sc-402420-NIC
- Target species: human
- 20 µg of transfection-ready, purified plasmid DNA; Suitable for up to 20 transfections
- cystatin C Double Nickase Plasmid (h) 는 한쌍의D10A mutated Cas9 nuclease 와 타깃특정 20 nt guide RNA (gRNA)를 인코딩하는 plasmid를 포함하고있으며 gRNA는 대응 CRISPR/Cas9 KO보다 높은 특이성을 띤 knockout gene을 발현하도록 디자인되였습니다.
- 한쌍의 gRNA는 약 20bp가량 떨어져 있으며 이는 게놈DNA의 Cas9-mediated double nicking을 발생하여 DSB를 모방합니다.
- 한쌍의 plasmid 중 하나는 selection에 필요한 puromycin-resistance gene을, 다른하나는 형질주입효율을 확인하는 GFP marker를 보유하고있습니다.
- cystatin C 더블 니케이스 플라스미드 (h) 및 cystatin C 더블 니케이스 플라스미드 (h2)는 CST3을 표적하는 서로 다른 쌍을 이루는 gRNA 설계를 암호화합니다. 하나 또는 두 가지 디자인 모두 이용 가능할 수 있습니다
- Transfection, gene knockout효율은 WB, IF나 IHC등 방법으로 측정할수있습니다, 권장하는 항체는 cystatin C Antibody (A-10): sc-515732
주문정보
| 제품명 | 카탈로그 번호 | 단위 | 가격 | 수량 | 관심품목 | |
cystatin C 더블 틈내기효소 플라스미드 (h) | sc-402420-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
cystatin C 더블 틈내기효소 플라스미드 (h2) | sc-402420-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
CST3는 시스태틴 C(cystatin C)를 암호화하며, 시스태틴 C는 분비형(type 2) 시스태틴으로서 카텝신(cathepsin)과 같은 리소좀 및 세포외 시스테인 프로테아제를 강력하게 억제함으로써 조직 재형성, 항원 처리, 염증성 미세환경에서의 단백질 분해를 제한합니다. 카텝신 활성을 균형 있게 조절함으로써 시스태틴 C는 세포외기질 회전율, 세포 이동, 그리고 면역 신호 및 세포 항상성과 연결된 엔도-리소좀 단백질분해효소 네트워크를 조절하는 데 기여합니다. CST3 발현 또는 시스태틴 C의 양이 변하는 현상은 신경퇴행성 과정, 아밀로이드 관련 병리, 혈관 및 신장 생물학과 연관되어 왔으며, 이로 인해 단백질 항상성(proteostasis)과 장벽 기능을 연구하는 분야에서 널리 사용되는 분자적 지표가 되었습니다. 이러한 특징은 CST3를 중추신경계(CNS)와 말초 시스템 전반에서 프로테아제–항(抗)프로테아제 균형을 탐구하기 위한 유용한 노드로 자리매김하게 합니다.
cystatin C 더블 니카제 플라스미드(h)는 human 세포주 내 CST3 유전자좌의 고특이성 편집을 위해 설계된 쌍을 이루는 플라스미드로 구성됩니다. 각 플라스미드는 Cas9 D10A 니카아제와 CST3 내의 반대 DNA 가닥을 표적으로 하는 고유한 sgRNA를 발현합니다. 반대 DNA 가닥의 인접 부위로 유도될 때, 두 니카아제는 서로 어긋난 단일 가닥 절단 부위를 생성하며, 이는 함께 엇갈린 이중 가닥 절단을 유발하여 두 가이드의 조화된 표적 활성을 필요로 합니다. 이렇게 생성된 DNA 절단은 내인성 세포 복구 경로, 특히 비동형 말단 결합(NHEJ)을 통해 해결되며, 이는 CST3의 기능을 방해하는 삽입 또는 결실을 초래한다. 표적 부위에서 이중 sgRNA 결합을 요구함으로써, 이중 니킹 접근법은 편집 특이성을 향상시키고 표적 정밀도에 대한 추가적인 제어가 필요한 응용을 위한 보완적인 CRISPR 전략을 제공한다.
편집된 세포를 효율적으로 식별할 수 있도록, 한 플라스미드는 형광 시각화를 위한 GFP를 발현하며, 다른 플라스미드는 항생제 선별을 위한 푸로마이신 내성 유전자를 포함하고 있습니다. 이러한 기능들은 공동 형질 도입된 세포 집단의 효율적인 농축을 지원하며, CST3 기능이 손상된 클론의 검증을 단순화합니다.
연구용으로만 사용하세요. 진단 또는 치료용이 아닙니다.