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CX3CR1 Double Nickase Plasmid (h) | sc-401206-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
CX3CR1 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-401206-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
CX3CR1 kodiert einen siebenfach transmembranen Chemokinrezeptor für CX3CL1 (Fraktalkin), der die Leukozytenadhäsion, Chemotaxis und Zell-Zell-Kommunikation in immunologischen und neuroimmunologischen Kontexten reguliert. Nach Ligandenbindung koppelt CX3CR1 an Gαi-abhängige Signalwege und moduliert nachgeschaltete Kaskaden, darunter PI3K–AKT, MAPK/ERK, Kalziumflüsse und die Umgestaltung des Zytoskeletts, die Migration und Überleben beeinflussen. Er ist von hoher Bedeutung für das Trafficking von Monozyten/Makrophagen, die Biologie der Mikroglia und vaskulär-immunologische Interaktionen, die entzündliche Gewebereaktionen prägen. Fehlregulierte CX3CR1-Signalisierung und variantenbedingte Veränderungen wurden bei Erkrankungen mit chronischer Entzündung und Neuroinflammation untersucht, einschließlich atherosklerotischer Prozesse und Mechanismen neurodegenerativer Erkrankungen.
CX3CR1 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des CX3CR1-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von CX3CR1 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die CX3CR1-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit CX3CR1-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.