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CRMP-4 Double Nickase Plasmid (m) | sc-423605-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
CRMP-4 Double Nickase Plasmid (m2) | sc-423605-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Dpysl3 kodiert das Collapsin-Response-Mediator-Protein 4 (CRMP-4), ein zytosolisches Phosphoprotein, das extrazelluläre Leitsignale mit der intrazellulären Umgestaltung des Zytoskeletts in Neuronen verknüpft. CRMP-4 ist an der Semaphorin/Neuropilin–Plexin-Signalübertragung beteiligt und reguliert nachgeschaltet die Mikrotubuli-Dynamik, das Axonwachstum und den Kollaps des Wachstumskegels über eine phosphorylierungsabhängige Kontrolle tubulin- und aktinassoziierter Prozesse. In Mausgeweben wurden Expression und Modifikationszustand von DPYSL3 mit neuroentwicklungsbezogenen Programmen und aktivitätsabhängigem Neuriten-Remodeling in Verbindung gebracht, was es für Studien zur Bildung neuronaler Schaltkreise und zur neuronalen Polarität relevant macht. Eine fehlregulierte Signalgebung der CRMP-Familie wurde mit Mechanismen verknüpft, die an Neurodegeneration und Verletzungsantworten beteiligt sind, was CRMP-4 als molekularen Einstiegspunkt für eine pfadorientierte krankheitsbiologische Forschung unterstützt.
CRMP-4 Das Double-Nickase-Plasmid (m) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des Dpysl3-Lokus in mouse-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von Dpysl3 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die Dpysl3-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit Dpysl3-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.