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CHIP/STUB1 Double Nickase Plasmid (h) | sc-400815-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
CHIP/STUB1 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-400815-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
STUB1 kodiert CHIP, eine U-Box-E3-Ubiquitin-Ligase und ein Co-Chaperon, das die Erkennung von HSP70/HSP90-Klientenproteinen mit deren Ubiquitinierung und dem proteasomalen Abbau koppelt und so die Proteinqualitätskontrolle reguliert. CHIP/STUB1 ist zudem in Autophagie-Wege und Stressantwort-Signalgebung eingebunden, um die Proteostase unter Bedingungen wie Hitzeschock und oxidativem Stress aufrechtzuerhalten. Durch die Kontrolle der Stabilität fehlgefalteter oder geschädigter Proteine beeinflusst es die zelluläre Homöostase, die mitochondriale Funktion und apoptosisbezogene Prozesse. Eine Fehlregulation oder pathogene Variation in STUB1 wird mit Neurodegeneration und Ataxie-Phänotypen in Verbindung gebracht, wodurch es einen intensiv untersuchten Knotenpunkt in proteinopathie-relevanten Signalwegen darstellt.
CHIP/STUB1 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des STUB1-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von STUB1 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die STUB1-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit STUB1-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.