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CD2AP CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-401218-ACT | 20 µg | $397.00 |
Das humane CD2AP-Gen kodiert das CD2-assoziierte Protein, ein Adapter-/Gerüstprotein, das Membranrezeptoren mit dem Aktin-Zytoskelett koppelt und Endozytose, Vesikeltransport sowie Signaltransduktion koordiniert. CD2AP ist an der Organisation des Schlitzdiaphragmas und des podozytären Zytoskeletts, an der Rezeptorinternalisierung und an der Stabilität von Zellkontakten beteiligt – über Interaktionen mit Nephrin, c-Cbl und aktinregulatorischen Komplexen – und beeinflusst dabei PI3K/AKT und verwandte Signalwege, die Zellüberleben und Morphologie steuern. Eine veränderte CD2AP-Expression oder -Funktion wird mit Defekten der glomerulären Filtrationsbarriere, proteinurischen Nierenerkrankungen sowie weiteren Phänotypen in Verbindung gebracht, die mit einer dysregulierten Zytoskelettdynamik und Signalgebung in Immunzellen zusammenhängen. Daher wird dieses Gen häufig in Modellen der Podozytenbiologie, des Membrantransports und rezeptorgetriebener Signalnetzwerke untersucht.
CD2AP Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen CD2AP-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
CD2AP Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des CD2AP-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der CD2AP-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen CD2AP-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native CD2AP-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von CD2AP-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des CD2AP-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem CD2AP-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.