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BSEP CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-400742-ACT | 20 µg | $397.00 | |||
BSEP CRISPR Activation Plasmid (h2) | sc-400742-ACT-2 | 20 µg | $397.00 |
ABCB11 kodiert die humane Gallensalz-Exportpumpe (BSEP), einen ATP-bindenden Kassetten-Transporter, der in der kanalikulären Membran von Hepatozyten lokalisiert ist und den ATP-abhängigen Efflux von Gallensäuren in die Galle vermittelt. Diese Transportaktivität ist zentral für die Gallensäurehomöostase und den enterohepatischen Kreislauf und beeinflusst die hepatische Lipidverarbeitung sowie Entgiftungsprozesse. Die Funktion von ABCB11 ist in gallensäuresensorische Signalwege eingebunden, darunter FXR-regulierte Transkriptionsnetzwerke, die Gallensäuresynthese und -transport koordinieren. Eine Fehlregulation oder verminderte BSEP-Aktivität ist mit cholestatischen Phänotypen und hepatozellulärem Stress infolge einer intrazellulären Akkumulation von Gallensäuren verbunden, was ABCB11 zu einem wichtigen Ziel für die Untersuchung der Gallenbildung und gallensäurevermittelter Signalübertragung macht.
BSEP Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen ABCB11-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
BSEP Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des ABCB11-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der ABCB11-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen BSEP-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native ABCB11-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von BSEP-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des BSEP-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem ABCB11-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.