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TRPC1 CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-401040-ACT | 20 µg | $397.00 |
TRPC1 codiert eine kanonische Untereinheit eines Transient-Receptor-Potential-(TRP)-Kanals, die zum rezeptorvermittelten und speichervermittelten Ca²⁺-Einstrom beiträgt und so zytosolische Calciumsignale formt, die Proliferation, Migration, Sekretion und Zytoskelett-Remodelling regulieren. Die TRPC1-Aktivität ist in die PLC/IP₃-Signalgebung eingebunden und wirkt mit calciumabhängigen Effektoren wie Calmodulin und Calcineurin/NFAT zusammen, um transkriptionelle und metabolische Programme zu modulieren. Eine veränderte TRPC1-Expression oder Kanalfunktion wurde mit einer gestörten Calciumhomöostase in Verbindung gebracht, wie sie bei kardiovaskulären, neuromuskulären und krebsassoziierten zellulären Phänotypen beobachtet wird. Als weit verbreitetes Membranprotein wird TRPC1 häufig in Modellen zur Mechanosensation, zu oxidativen Stressantworten und zu Prozessen untersucht, die mit der epithelial-mesenchymalen Transition verknüpft sind.
TRPC1 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen TRPC1-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
TRPC1 Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des TRPC1-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der TRPC1-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen TRPC1-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native TRPC1-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von TRPC1-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des TRPC1-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem TRPC1-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.