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TASK-1 Double Nickase Plasmid (h) | sc-403477-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
TASK-1 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-403477-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
KCNK3 kodiert TASK-1 (K2P3.1), einen Kaliumkanal mit zwei Porendomänen, der Hintergrund‑K⁺‑Leckströme erzeugt, um das Ruhemembranpotenzial zu stabilisieren und die zelluläre Erregbarkeit feinzujustieren. Die Aktivität von TASK-1 wird durch den extrazellulären pH-Wert, Lipid‑Signalwege und GPCR‑gekoppelte Signalwege reguliert, die die Membranleitfähigkeit und nachgeschaltete Ca²⁺‑abhängige Signalprozesse modulieren. In menschlichen Geweben trägt TASK-1 zur elektrophysiologischen Kontrolle in kardialen und pulmonal-vaskulären Zellen sowie in Neuronen bei und beeinflusst dabei Prozesse wie die Repolarisation des Aktionspotenzials, die Regulation des Gefäßtonus und die Reiz‑Sekretions‑Kopplung. Eine dysregulierte KCNK3/TASK-1‑Funktion wurde mit veränderten kardiopulmonalen und neurophysiologischen Phänotypen in Verbindung gebracht und ist damit ein nützliches Ziel für mechanistische Studien ionenkanalabhängiger Signalnetzwerke.
TASK-1 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des KCNK3-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von KCNK3 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die KCNK3-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit KCNK3-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.