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SH-PTP2 Double Nickase Plasmid (m) | sc-422503-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
SH-PTP2 Double Nickase Plasmid (m2) | sc-422503-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Das murine Gen **Ptpn11** kodiert **SH-PTP2 (SHP2)**, eine zytoplasmatische Protein-Tyrosinphosphatase mit tandemartig angeordneten SH2-Domänen, die Signale von Rezeptor-Tyrosinkinasen, Zytokinrezeptoren und immuninhibitorischen Rezeptoren weiterleitet. Durch die Dephosphorylierung zentraler Docking-Proteine und die Modulation von Adapterkomplexen fördert SH-PTP2 die **RAS–MAPK/ERK**-Signalübertragung und kann zudem die Dynamik der **PI3K–AKT**- und **JAK–STAT**-Signalwege beeinflussen, wodurch Proliferations-, Differenzierungs- und Migrationsantworten geprägt werden. Die Aktivität von Ptpn11 trägt zu Entwicklungs- und hämatopoetischen Signalprogrammen bei, und eine Fehlregulation SH-PTP2-abhängiger Netzwerke wird in Modellen aberranter Wachstumsfaktor-Signalgebung und der Funktion von Immunzellen umfassend untersucht. Als Knotenpunkt der Phosphotyrosin-Signalgebung wird Ptpn11 häufig genutzt, um das Zusammenspiel von Signalwegen, Feedback-Kontrolle und kontextspezifische Signaltransduktion in murinen Zellen und Geweben zu analysieren.
SH-PTP2 Das Double-Nickase-Plasmid (m) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des Ptpn11-Lokus in mouse-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von Ptpn11 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die Ptpn11-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit Ptpn11-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.