Date published: 2026-7-16

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SH-PTP2 Double Nickase Plasmid (m): sc-422503-NIC

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Datenblätter
  • Zielspezies: mouse
  • 20 µg transfektionsfertige, aufgereinigte Plasmid DNA; geeignet für 20 Transfektionen
  • Das SH-PTP2 Double Nickase Plasmid (m) wird als Plasmid-Paar geliefert. Die einzelnen Plasmide kodieren für eine D10A mutierte Cas9 Nuklease sowie für je eine unterschiedliche, zielspezifische 20nt guide RNA (gRNA) Sequenz. Dies erlaubt eine hohe Knockout-Effizienz bei gleichzeitig größerer Spezifität als das entsprechende CRISPR/Cas9 KO Plasmid
  • gRNA Sequenzpaare liegen ca. 20 bp auseinander um ein spezifisches Cas9-vermitteltes "Double Nicking" der genomischen DNA zu erlauben und so im Resultat den Effekt eines Doppelstrangbruchs nachzuahmen.
  • Ein Plasmid kodiert für ein Puromycin-Resistenzgen zur Selektion von stabilen Knockout-Zellen. Das andere Plasmid kodiert für ein GFP-Gen für den visuellen Nachweis der Transfektion
  • SH-PTP2 Double-Nickase-Plasmid (m) und SH-PTP2 Double-Nickase-Plasmid (m2) kodieren unterschiedliche gepaarte gRNA-Designs, die auf Ptpn11 abzielen. Möglicherweise ist eines oder sind beide Designs verfügbar
  • Nach der Transfektion kann die Effizienz des Gen-Knockouts per Western Blot oder histologisch mit folgendem Antikörper überprüft werden: SH-PTP2: sc-7384
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    SH-PTP2 Double Nickase Plasmid (m)

    sc-422503-NIC
    20 µg
    $410.00

    SH-PTP2 Double Nickase Plasmid (m2)

    sc-422503-NIC-2
    20 µg
    $410.00

    Das murine Gen **Ptpn11** kodiert **SH-PTP2 (SHP2)**, eine zytoplasmatische Protein-Tyrosinphosphatase mit tandemartig angeordneten SH2-Domänen, die Signale von Rezeptor-Tyrosinkinasen, Zytokinrezeptoren und immuninhibitorischen Rezeptoren weiterleitet. Durch die Dephosphorylierung zentraler Docking-Proteine und die Modulation von Adapterkomplexen fördert SH-PTP2 die **RAS–MAPK/ERK**-Signalübertragung und kann zudem die Dynamik der **PI3K–AKT**- und **JAK–STAT**-Signalwege beeinflussen, wodurch Proliferations-, Differenzierungs- und Migrationsantworten geprägt werden. Die Aktivität von Ptpn11 trägt zu Entwicklungs- und hämatopoetischen Signalprogrammen bei, und eine Fehlregulation SH-PTP2-abhängiger Netzwerke wird in Modellen aberranter Wachstumsfaktor-Signalgebung und der Funktion von Immunzellen umfassend untersucht. Als Knotenpunkt der Phosphotyrosin-Signalgebung wird Ptpn11 häufig genutzt, um das Zusammenspiel von Signalwegen, Feedback-Kontrolle und kontextspezifische Signaltransduktion in murinen Zellen und Geweben zu analysieren.

    SH-PTP2 Das Double-Nickase-Plasmid (m) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des Ptpn11-Lokus in mouse-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von Ptpn11 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die Ptpn11-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.

    Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit Ptpn11-Störung.

    Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.