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RIG-I CRISPR/Cas9 KO质粒 (m) | sc-432915 | 20 µg | $397.00 | |||
RIG-I HDR 质粒 (m) | sc-432915-HDR | 20 µg | $445.00 |
小鼠 Ddx58 编码 RIG-I(DDX58),这是一种位于胞质内的 DExD/H-box RNA 解旋酶,可作为模式识别受体识别带有 5′-三磷酸末端并具有短双链结构的病毒 RNA。与配体结合后,RIG-I 发生构象激活,并通过 MAVS 传递信号,激活 TBK1/IKKε 以及 IRF3/IRF7,从而在 NF-κB 依赖的炎症转录程序协同下诱导 I 型干扰素的产生。该通路与抗病毒限制性程序、细胞因子网络及反馈调控因子相互交织,共同塑造免疫细胞与非免疫细胞中的先天免疫基调。RIG-I 信号失调与异常的干扰素反应和炎症表型相关,因此 Ddx58 是研究小鼠模型中宿主—病原体相互作用及免疫稳态的重要关键节点。
RIG-I CRISPR/Cas9 敲除质粒(m)是一组质粒池,旨在针对性地破坏mouse细胞系中的Ddx58基因。该文库中的每个质粒均共表达一种独特的sgRNA,针对Ddx58基因座内的不同位点,同时表达来自化脓性链球菌的Cas9核酸酶,并编码GFP以实现对成功转染细胞的荧光识别和富集。这种多引导策略提高了诱导产生功能性敲除的移码突变或缺失的概率,为单引导策略提供了更可靠的替代方案。在多个位点诱导的双链断裂(DSBs)可通过非同源末端连接(NHEJ)修复,或者当与随附的HDR供体模板配合使用时,可在基因座内的特定靶位点通过同源导向修复(HDR)进行修复。
若与表达 RFP 的 HDR 供体结合使用,可同时利用 GFP 和 RFP 荧光区分转染细胞群与编辑后的细胞群,从而简化基于流式细胞术的分选和克隆筛选工作流程。
对于需要确认且可筛选的敲除克隆的应用,RIG-I HDR质粒(m)包含一个HDR供体构建体,其中含有嘧啶霉素抗性盒(PuroR)和红色荧光蛋白(RFP)报告基因,两侧由针对特定Ddx58靶位点的同源臂包围。
与 RIG-I CRISPR/Cas9 敲除质粒(m)共转染时:
HDR 供体构建体的loxP 位点位于 PuroR-RFP 选择盒的侧翼,可在克隆确认后干净利落地去除标记。通过随附的Cre 载体:sc-418923,瞬时表达 Cre 重组酶,切除基因盒,在Ddx58 基因座内留下最小的残留 loxP 位点,消除对下游检测的潜在干扰效应。
这种两步法
仅供研究使用。不用于诊断或治疗。