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Rab 27a Double Nickase Plasmid (h) | sc-401116-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
Rab 27a Double Nickase Plasmid (h2) | sc-401116-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
RAB27A kodiert die kleine GTPase Rab27a, einen zentralen Regulator des Vesikeltransports, der über Effektoren wie Melanophilin und den Exocyst-Komplex das Andocken und die Fusion sekretorischer Granula mit der Plasmamembran steuert. In Immunzellen koordiniert Rab27a die Exozytose lytischer Granula und die zytotoxische Funktion, während es in Melanozyten den Melanosomentransport und die Pigmentierung unterstützt. Diese Prozesse stehen in Wechselwirkung mit der Dynamik des Zytoskeletts, der SNARE-abhängigen Membranfusion und regulierten Sekretionswegen. Eine Fehlregulation der RAB27A-Aktivität wurde mit Störungen der Immunfunktion und der Pigmentierung in Verbindung gebracht; zudem wird RAB27A häufig im Kontext von Tumorzellinvasion und Metastasierung untersucht, etwa über die Freisetzung extrazellulärer Vesikel und Programme des Membran- und Vesikeltransports.
Rab 27a Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des RAB27A-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von RAB27A abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die RAB27A-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit RAB27A-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.