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PRMT8 CRISPR/Cas9 KO质粒 (m) | sc-436331 | 20 µg | $397.00 | |||
PRMT8 HDR 质粒 (m) | sc-436331-HDR | 20 µg | $445.00 |
Prmt8 编码 PRMT8,这是一种在脑组织中富集的 I 型蛋白精氨酸甲基转移酶,可催化蛋白底物精氨酸残基的非对称二甲基化,从而影响蛋白–蛋白相互作用与信号转导。通过调控翻译后甲基化,PRMT8 参与神经元发育、突触功能以及膜相关信号过程的调节,并与 PRMT 家族酶所影响的更广泛表观遗传及 RNA/蛋白调控网络发生交叉。精氨酸甲基化动态的改变与神经生物学相关表型有关,并可影响控制分化、应激反应和细胞骨架组织的通路。在小鼠体系中,Prmt8 功能缺失研究有助于在正常及疾病相关背景下探究神经元稳态以及甲基化依赖性调控机制,但不暗示临床结论。
PRMT8 CRISPR/Cas9 敲除质粒(m)是一组质粒池,旨在针对性地破坏mouse细胞系中的Prmt8基因。该文库中的每个质粒均共表达一种独特的sgRNA,针对Prmt8基因座内的不同位点,同时表达来自化脓性链球菌的Cas9核酸酶,并编码GFP以实现对成功转染细胞的荧光识别和富集。这种多引导策略提高了诱导产生功能性敲除的移码突变或缺失的概率,为单引导策略提供了更可靠的替代方案。在多个位点诱导的双链断裂(DSBs)可通过非同源末端连接(NHEJ)修复,或者当与随附的HDR供体模板配合使用时,可在基因座内的特定靶位点通过同源导向修复(HDR)进行修复。
若与表达 RFP 的 HDR 供体结合使用,可同时利用 GFP 和 RFP 荧光区分转染细胞群与编辑后的细胞群,从而简化基于流式细胞术的分选和克隆筛选工作流程。
对于需要确认且可筛选的敲除克隆的应用,PRMT8 HDR质粒(m)包含一个HDR供体构建体,其中含有嘧啶霉素抗性盒(PuroR)和红色荧光蛋白(RFP)报告基因,两侧由针对特定Prmt8靶位点的同源臂包围。
与 PRMT8 CRISPR/Cas9 敲除质粒(m)共转染时:
HDR 供体构建体的loxP 位点位于 PuroR-RFP 选择盒的侧翼,可在克隆确认后干净利落地去除标记。通过随附的Cre 载体:sc-418923,瞬时表达 Cre 重组酶,切除基因盒,在Prmt8 基因座内留下最小的残留 loxP 位点,消除对下游检测的潜在干扰效应。
这种两步法
仅供研究使用。不用于诊断或治疗。