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PDGF-B Double Nickase Plasmid (h) | sc-400586-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
PDGF-B Double Nickase Plasmid (h2) | sc-400586-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Das humane **PDGFB**-Gen kodiert die Untereinheit B des Thrombozyten-abgeleiteten Wachstumsfaktors (**PDGF‑B**), einen sezernierten dimeren Wachstumsfaktor, der vorwiegend über **PDGFRβ** signalisiert und dadurch die Rekrutierung von Perizyten, die Gefäßreifung sowie Proliferation und Migration mesenchymaler Zellen reguliert. PDGF‑B aktiviert kanonische Rezeptor-Tyrosinkinase-Signalwege, darunter **PI3K–AKT**, **RAS–MAPK** und **PLCγ–PKC**, und verknüpft so extrazelluläre Signale mit Zytoskelett-Remodelling und Überlebensprogrammen. In der normalen Physiologie ist PDGF‑B zentral für Wundheilung, Dynamik der extrazellulären Matrix und Gewebeumbau in stromalen Kompartimenten. Eine dysregulierte PDGFB/PDGFR-Signalgebung wird mit aberranter Angiogenese, fibrotischem Remodeling und onkogenen stromalen Interaktionen in Verbindung gebracht, weshalb PDGF‑B häufig im Fokus mechanistischer Studien zu mikroenvironmentgetriebenen Krankheitsprozessen steht.
PDGF-B Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des PDGFB-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von PDGFB abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die PDGFB-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit PDGFB-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.