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NUMB CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-401673-ACT | 20 µg | $397.00 |
Das humane Gen **NUMB** kodiert ein endozytotisches Adapterprotein, das Zellschicksalsentscheidungen reguliert, indem es die Notch-Signalgebung antagonisiert und den ubiquitinabhängigen Transport von Membranrezeptoren koordiniert. NUMB ist über Interaktionen mit Komponenten der AP2-/EPS15-Familie an der clathrinvermittelten Endozytose und an Polarisationsprogrammen beteiligt und beeinflusst dadurch asymmetrische Zellteilung, Differenzierung und die Aufrechterhaltung von Vorläuferzellpopulationen. Durch die Modulation des Rezeptor-Turnovers und nachgeschalteter transkriptioneller Outputs verknüpft NUMB Entwicklungs-Signalwege mit der Organisation des Zytoskeletts sowie der Vesikeldynamik. Eine Dysregulation der NUMB-Expression oder -Lokalisation wird mit einer aberranten Aktivität des Notch-Signalwegs und veränderten proliferativen gegenüber differenziativen Zuständen in mehreren krankheitsrelevanten zellulären Kontexten in Verbindung gebracht.
NUMB Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen NUMB-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
NUMB Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des NUMB-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der NUMB-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen NUMB-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native NUMB-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von NUMB-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des NUMB-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem NUMB-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.