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NMDAε2 Double Nickase Plasmid (h) | sc-400654-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
NMDAε2 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-400654-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
GRIN2B kodiert die NMDAε2-(GluN2B)-Untereinheit der N-Methyl-D-Aspartat-Rezeptoren, ligandengesteuerter Ionenkanäle, die während der exzitatorischen Neurotransmission den Ca²⁺-Einstrom regulieren. NMDAε2-haltige Rezeptoren prägen synaptische Plastizität, Lernen und Gedächtnis, indem sie neuronale Aktivität an nachgeschaltete Signalwege koppeln, etwa CaMKII/CREB-abhängige Transkription, MAPK/ERK-Signalgebung und aktivitätsabhängige Umgestaltung des Zytoskeletts. Die Funktion von GRIN2B ist eng mit der Entwicklung glutamaterger Synapsen und mit Reaktionen auf exzitotoxischen Stress verknüpft und integriert Signale, die die Reifung dendritischer Spines und die Feinabstimmung neuronaler Schaltkreise beeinflussen. Genetische Variation und Fehlregulation von GRIN2B wurden mit neuroentwicklungsbedingten und neuropsychiatrischen Phänotypen in Verbindung gebracht, was seinen Einsatz in mechanistischen Studien zur synaptischen Signalübertragung und zur Funktion neuronaler Netzwerke unterstützt.
NMDAε2 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des GRIN2B-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von GRIN2B abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die GRIN2B-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit GRIN2B-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.