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NHE-1 Double Nickase Plasmid (h) | sc-400748-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
NHE-1 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-400748-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
SLC9A1 kodiert den Na+/H+-Austauscher NHE-1 der Plasmamembran, einen zentralen Regulator des intrazellulären pH-Werts, des Zellvolumens und der Natriumhomöostase. Indem NHE-1 Protonen im Austausch gegen extrazelluläres Natrium aus der Zelle transportiert, unterstützt er pH-sensitive Prozesse wie Zytoskelett-Umbau, Dynamik fokaler Adhäsionen und Zellmotilität und ist mit MAPK-Signalwegen, Rho-Familie-GTPase-Pfaden sowie Ionentransport-Netzwerken verknüpft. Die Aktivität von NHE-1 beeinflusst die Epithel- und Herzphysiologie, die neuronale Erregbarkeit und zelluläre Antworten auf osmotischen und metabolischen Stress. Eine fehlregulierte SLC9A1/NHE-1-Funktion wurde u. a. in Zusammenhängen wie der Biologie ischämiebedingter Schädigung, hypertonieassoziiertem Remodeling, Invasionsphänotypen von Krebszellen und neurodegenerativen Stressantworten in Verbindung gebracht, was sie zu einem nützlichen Knotenpunkt für mechanistische Studien macht.
NHE-1 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des SLC9A1-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von SLC9A1 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die SLC9A1-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit SLC9A1-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.