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MCP-1 Double Nickase Plasmid (h) | sc-401046-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
MCP-1 Double Nickase Plasmid (h2) | sc-401046-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
Humanes CCL2 kodiert das Monozyten-Chemoattraktant-Protein 1 (MCP-1), ein sezerniertes CC-Chemokin, das die Rekrutierung von Monozyten/Makrophagen und anderen CCR2-exprimierenden Leukozyten an Orte von Gewebestress koordiniert. Die MCP-1-Signalgebung reguliert die Chemotaxis von Leukozyten, Endothel–Leukozyten-Interaktionen und die Polarisation von Makrophagen und ist in NF-κB- und MAPK-gekoppelte entzündliche Transkriptionsprogramme eingebettet. Eine fehlregulierte CCL2/MCP-1-Expression wird mit chronisch entzündlichen Mikromilieus in Verbindung gebracht, darunter Atherosklerose, metabolische Entzündung, Neuroinflammation und die tumorassoziierte Infiltration myeloider Zellen. Als zentrales Chemokin im Immunzell-Trafficking wird CCL2 häufig eingesetzt, um zu modellieren, wie entzündliche Signale Gewebeumbau und krankheitsassoziierte Immunphänotypen prägen.
MCP-1 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des CCL2-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von CCL2 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die CCL2-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit CCL2-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.