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MARCKS CRISPR Activation Plasmid (h) | sc-400837-ACT | 20 µg | $397.00 |
Das myristoylierte alaninreiche C-Kinase-Substrat (MARCKS) ist ein prominentes PKC-Substrat, das mit der Plasmamembran und dem Aktin-Zytoskelett assoziiert, um Zellform, Adhäsion und Motilität zu regulieren. Durch die Bindung von Phosphatidylinositol-4,5-bisphosphat (PIP2) und die Quervernetzung von F‑Aktin beeinflusst MARCKS den Membrantransport, Exozytose/Endozytose sowie die Signaltransduktion nachgeschaltet von PKC und Ca2+/Calmodulin. Eine MARCKS-abhängige Umgestaltung des Zytoskeletts wird sowohl mit Neuritenauswuchs und synaptischer Plastizität als auch mit der Migration von Immunzellen und inflammatorischer Signalgebung in Verbindung gebracht. Eine dysregulierte MARCKS-Expression oder -Phosphorylierung wurde in Kontexten der Krebsbiologie, Neuroinflammation und pulmonaler Erkrankungen beschrieben, was seine Nutzung als mechanistischen Knotenpunkt in Studien zu Migration, Invasion und stimulusabhängiger Signalgebung unterstützt.
MARCKS Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) bietet einen gezielten, nicht-destruktiven Ansatz zur Hochregulierung der endogenen MARCKS-Expression, ohne die zugrunde liegende DNA-Sequenz zu verändern.
MARCKS Das CRISPR-Aktivierungsplasmid (h) ist ein aus drei Plasmiden bestehendes synergistisches Aktivierungsmediator-System (SAM), das für eine hocheffiziente, ortsspezifische transkriptionelle Hochregulation des MARCKS-Lokus in menschlichen Zelllinien entwickelt wurde. Das System basiert auf einem katalytisch inaktiven Cas9 (dCas9), das zwei inaktivierende Mutationen (D10A und N863A) trägt, welche die Nukleaseaktivität eliminieren, während die DNA-Bindung erhalten bleibt. Dieses dCas9 ist mit VP64, einem potenten Transkriptionsaktivator, fusioniert und wird zusammen mit einem Blasticidin-Resistenzgen zur Selektion koexprimiert. Das zweite Plasmid kodiert das MS2-p65-HSF1-Fusionsprotein, einen sekundären Aktivatorkomplex, der zusammen mit dCas9-VP64 wirkt, sowie ein Hygromycin-Resistenzgen. Das dritte Plasmid kodiert für eine zielspezifische 20-nt-sgRNA, die an zwei MS2-RNA-Aptamere fusioniert ist, welche den MS2-p65-HSF1-Komplex an die Aktivierungsstelle rekrutieren, begleitet von einem Puromycin-Resistenzgen. Die drei Plasmide werden im Massenverhältnis 1:1:1 verabreicht, um eine ausgewogene Expression aller Systemkomponenten zu gewährleisten.
Nach der Assemblierung am Zielort bindet der SAM-Komplex etwa 200 bp stromaufwärts der MARCKS-Transkriptionsstartstelle, wo VP64, p65 und HSF1 gemeinsam die Transkriptionsmaschinerie rekrutieren und die Hochregulation der endogenen MARCKS-Expression vorantreiben. Im Gegensatz zu nukleaseaktivem Cas9 verursacht dCas9 keine Doppelstrangbrüche und verändert die genomische Sequenz nicht, wodurch der native MARCKS-Locus erhalten bleibt und die Untersuchung von MARCKS-abhängigen Transkriptionsreaktionen am endogenen Locus ermöglicht wird. Dies macht es zu einem wertvollen Werkzeug für Funktionsstudien, die Identifizierung von Zielgenen und die Modellierung der Wiederherstellung des MARCKS-Signalwegs in Tumorzellen mit stillgelegtem oder reduziertem MARCKS-Ausdruck.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.