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MAGI-1 Double Nickase Plasmid (h) | sc-402283-NIC | 20 µg | $410.00 |
MAGI1 kodiert MAGI-1, ein membranassoziiertes Gerüstprotein der Guanylatkinase-Familie (MAGUK), das in Epithel- und Endothelgeweben an Tight Junctions und anderen Zell-Zell-Kontaktstellen angereichert ist. MAGI-1 organisiert Multiproteinkomplexe, indem es transmembrane Junction-Komponenten mit Signaleffektoren koppelt, und trägt so zur Koordination von Polarität, Barrierefunktion und Zusammenbau von Zellkontakten bei. Über seine PDZ- und WW-Domänen ist MAGI-1 mit Signalwegen verknüpft, die an Zytoskelett-Remodelling und Wachstumskontrolle beteiligt sind, einschließlich einer Wechselwirkung mit der PTEN/PI3K–AKT-Signalkaskade und adhesionsabhängigen Signalnetzwerken. Eine Dysregulation der MAGI1-Expression oder der junctionalen Lokalisation wurde mit einer veränderten Epithelintegrität und aberranter Signalübertragung in Zusammenhängen in Verbindung gebracht, die für die Krebsbiologie und barriereassoziierte Entzündungsprozesse relevant sind.
MAGI-1 Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des MAGI1-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von MAGI1 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die MAGI1-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit MAGI1-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.