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MacroH2A Double Nickase Plasmid (h) | sc-407013-NIC | 20 µg | $410.00 | |||
MacroH2A Double Nickase Plasmid (h2) | sc-407013-NIC-2 | 20 µg | $410.00 |
H2AFY2 kodiert macroH2A, eine Histonvariante von H2A, die zur Etablierung spezialisierter Chromatinzustände beiträgt und die Transkriptionsleistung im gesamten Genom moduliert. Die Ablagerung von macroH2A ist mit epigenetischem Gedächtnis, X‑Chromosom-assoziierter Chromatinregulation und stabiler Genrepression verknüpft und überschneidet sich mit Signalwegen, die den Zellzyklusverlauf, die Linienfestlegung und stressresponsive Transkription steuern. Durch die Beeinflussung der Nukleosomendynamik und der Chromatinzugänglichkeit trägt macroH2A zur Regulation DNA‑matrizenabhängiger Prozesse einschließlich DNA‑Reparatur und Replikations‑Timing bei. Eine dysregulierte Balance der macroH2A‑Isoformen und veränderte Chromatinbelegung wurden mit gestörten Differenzierungsprogrammen und krebsrelevanten transkriptionellen Phänotypen in Verbindung gebracht, was H2AFY2 zu einem interessanten Ziel in der Epigenetik- und Tumorbiologieforschung macht.
MacroH2A Das Double-Nickase-Plasmid (h) besteht aus einem aufeinander abgestimmten Plasmidpaar, das für die hochspezifische Bearbeitung des H2AFY2-Lokus in human-Zelllinien entwickelt wurde. Jedes Plasmid exprimiert eine Cas9-D10A-Nickase und eine spezifische sgRNA, die auf entgegengesetzte DNA-Stränge innerhalb von H2AFY2 abzielt. Wenn sie auf benachbarte Stellen auf entgegengesetzten DNA-Strängen gerichtet sind, erzeugen die beiden Nickasen versetzte Einzelstrang-Schnitte, die zusammen einen versetzten Doppelstrangbruch erzeugen, was eine koordinierte On-Target-Aktivität beider Guides erfordert. Der resultierende DNA-Bruch wird durch endogene zelluläre Reparaturwege behoben, meist durch nicht-homologe Endverknüpfung (NHEJ), was zu Insertionen oder Deletionen führt, die die H2AFY2-Funktion stören. Durch die Notwendigkeit einer doppelten sgRNA-Bindung am Zielort erhöht der Doppel-Nick-Ansatz die Spezifität der Bearbeitung und bietet eine komplementäre CRISPR-Strategie für Anwendungen, bei denen eine zusätzliche Kontrolle über die Zielgenauigkeit gewünscht ist.
Um eine effiziente Identifizierung editierter Zellen zu unterstützen, kodiert ein Plasmid GFP zur fluoreszierenden Visualisierung transfizierter Populationen, während das Begleitplasmid ein Puromycin-Resistenzgen für die Antibiotika-Selektion trägt. Zusammen unterstützen diese Merkmale eine effiziente Anreicherung co-transfizierter Populationen und vereinfachen die Validierung von Klonen mit H2AFY2-Störung.
Nur für Forschungszwecke. Nicht für diagnostische oder therapeutische Zwecke bestimmt.